Nouveaux traitements anti-inflammatoires dans la cirrhose. Une étude basée sur la littérature

La cirrhose du foie est une maladie caractérisée par de multiples complications et un mauvais pronostic. La prévalence augmente dans le monde entier. L’inflammation chronique est en cours dans la cirrhose du foie. Aucun remède contre l’inflammation n’est disponible et le traitement actuel de la cirrhose du foie n’est que symptomatique. Cependant, plusieurs agents médicaux différents ont été suggérés comme médicaments de guérison potentiels. La majorité sont testées sur des rongeurs, mais peu d’essais humains sont effectués. Cette revue porte sur les agents médicaux décrits dans la littérature avec des effets supposés apaisants et curatifs sur la cirrhose du foie.

Introduction

La cirrhose du foie est une maladie chronique avec une prévalence croissante. Ses étiologies les plus courantes sont la consommation d’alcool, l’hépatite virale, l’obésité, le diabète sucré et le syndrome métabolique entraînant une stéatohépatite non alcoolique dans le cadre de la stéatose hépatique non alcoolique (1). En général, la cirrhose du foie résulte de la formation continue de fibrose et une progression ultérieure entraîne une hypertension portale, une encéphalopathie hépatique et un risque accru de défaillance d’organe et de carcinome hépatocellulaire (CHC), qui est associé à une mortalité élevée (2).

L’inflammation chronique dans les maladies alcooliques du foie est médiée par une réponse directe à l’alcool et une réponse inflammatoire indirecte au lipopolysaccharide (LPS) dérivé du microbiote intestinal, entraînant une réponse oxydative-inflammatoire plus forte (3). Avec une inflammation systémique continue, un dysfonctionnement endothélial et une fibrogenèse (4) évoluent dans le foie et sont associés à des cytokines inflammatoires élevées et à une activation des cellules immunitaires (5). L’inflammation peut être causée par la translocation sur la paroi intestinale d’agents pathogènes ou de modèles moléculaires associés aux agents pathogènes dérivés (PAMP) et de modèles moléculaires associés aux dommages (DAMP). Ce sont des produits d’origine microbienne produits par des agents pathogènes et non par l’hôte. Les produits des cellules apoptotiques (6) se transloquent dans la circulation porte et systémique via une barrière intestinale altérée. Avec une blessure continue, les PAMP et les DAMP peuvent activer les cellules étoilées hépatiques (CSH) avec des effets indésirables indésirables (6). Les CSH sont une source de myofibroblastes et de fibroblastes portals, qui pilotent le processus fibrogène (2). Lorsqu’elles sont au repos, les CSH agissent principalement comme des réserves de vitamine A, mais elles peuvent sécréter abondamment des protéines de la matrice extracellulaire et différentes protéinases qui provoquent un remodelage indésirable de l’architecture hépatique lorsqu’elles sont activées.

Actuellement, il n’existe aucun remède pour cette inflammation chronique de la cirrhose, et le traitement se concentre principalement sur le soulagement des symptômes. Lorsque l’ascite se développe au stade décompensé, les diurétiques et la perfusion d’albumine améliorent la rétention hydrique et la fonction circulatoire après la paracentèse. Les bêta-bloquants non sélectifs (NSBB) diminuent l’hypertension portale et sont utilisés pour le traitement à long terme comme prophylaxie primaire et secondaire des saignements des varices œsophagiennes (7, 8). L’encéphalopathie hépatique peut être inversée à l’aide d’antibiotiques et de lactulose, car l’encéphalopathie est souvent déclenchée par des infections et de la constipation (9).

Il y a une incidence réduite de CHC chez les patients traités avec des NSBB (10). Le mécanisme sous-jacent pourrait être une réduction de la translocation bactérienne de l’intestin, ce qui peut diminuer la charge portale des PAMP et donc l’inflammation hépatique. Comme l’inflammation hépatique et la néo-angiogenèse sont des moteurs essentiels de la pathogenèse du CHC, le blocage bêta-adrénergique peut entraver l’angiogenèse en inhibant la production du facteur de croissance endothélial vasculaire et prévenir le CHC (11). Les études préliminaires nécessitent d’autres explorations scientifiques pour étayer cette hypothèse. Les diurétiques sont le traitement de premier choix de l’ascite dans la cirrhose décompensée (8, 12). Cependant, les effets secondaires des diurétiques comprennent les perturbations hydriques et électrolytiques, la déshydratation et l’insuffisance rénale. La perfusion d’albumine est utilisée pour prévenir le développement du syndrome hépatorénal (SHR) et soulager les troubles circulatoires dans la cirrhose décompensée (13, 14).

En plus de ses effets osmotiques, l’albumine a un effet immunomodulateur (14-16) qui est mesurable par une réponse significativement réduite de l’interleukine-6 ​​(IL-6) lors d’un traitement à forte dose d’albumine (14). Ainsi, l’albumine peut améliorer la survie et prévenir les complications de la cirrhose décompensée, et ses effets immunomodulateurs nécessitent une exploration plus approfondie en ce qui concerne la prévention de l’insuffisance hépatique aiguë sur chronique (ACLF). L’inflammation et le stress oxydatif sont considérés comme des éléments clés dans la pathologie de la cirrhose. Lorsque le foie est blessé, il peut augmenter les espèces réactives de l’oxygène et de l’azote (ROS, RNS). Ces intermédiaires peuvent induire des mécanismes pro-fibrogéniques. Le stress oxydatif provoque une lésion par une altération de l’ADN, des protéines et des lipides, entraînant une activation des cellules étoilées hépatiques ; d’où l’un des déclencheurs de la fibrogenèse également élicitée par les voies inflammatoires. Le stress oxydatif et l’inflammation sont étroitement liés et peuvent créer un cercle vicieux pour aggraver les lésions hépatiques (17).

De multiples voies sont pertinentes et intéressantes lorsqu’on cherche à traiter la cirrhose du foie. En particulier, les mécanismes inflammatoires et oxydatifs chroniques et systémiques qui interviennent dans plusieurs complications de la cirrhose suggèrent que les cascades inflammatoires sont des cibles possibles pour le traitement de la cirrhose. La thérapie disponible est inadéquate pour traiter la fibrogenèse et l’inflammation des tissus hépatiques, et de nouvelles cibles et thérapies sont recherchées. La présente revue vise à évaluer d’éventuels agents anti-inflammatoires en tant que candidats médicaments potentiels susceptibles d’atténuer, de guérir ou d’augmenter la survie des patients atteints de cirrhose du foie.

Méthodes

Une recherche de la littérature publiée au cours des 10 dernières années a été menée dans PubMed et Medline. Les titres et les résumés ont été recherchés pour les termes clés suivants dans différentes combinaisons : «cirrhose», «cirrhose du foie», «cohorte», «inflammation», «anti-inflammatoire», «maladie chronique du foie», «médicaments», “cibles” “guérir”. La stratégie de recherche complète est décrite dans le tableau supplémentaire 1. Après accord entre les auteurs, des recherches spécifiques ont ensuite été effectuées qui incluent les termes suivants combinés à «cirrhose du foie»: «silymarine», «anti-TNF-α», «curcumine, «Transplantation de microbiote fécal», «énoxaparine», «étanercept», «artésunate», «célécoxib», «aspirine», «kahweol», «mitoquinone», «sel d’arginine de glycyrrhizine», «pentoxifylline», «statine», «emricasan», «lanifibranor», «récepteur de peptide formyle 2 (WKYMVm)», «tanshinone».

Les critères d’inclusion pour les études étaient que leur texte intégral était en anglais et que leur conception était constituée d’essais cliniques, d’études cliniques, d’études comparatives, d’études multicentriques, de rapports de cas et d’études observationnelles. Les études interventionnelles ont été prises en compte, qu’elles aient eu un groupe témoin ou qu’elles aient été réalisées en aveugle. De plus, des études évaluant l’innocuité, l’efficacité et les mécanismes thérapeutiques d’agents pharmacologiques ayant des effets anti-inflammatoires chez l’homme ont été incluses, et des études évaluant les mécanismes inflammatoires dans des modèles de rongeurs ont également été évaluées pour étayer notre compréhension des mécanismes immunologiques. Certaines études utilisant des modèles de rongeurs ont été prises en compte pour inclusion, car la différenciation entre la fibrose et la cirrhose diffère nettement de celle chez l’homme. Ainsi, la mention de la cirrhose était un critère dans les études sur les rongeurs. Les études de modèles cellulaires n’ont été considérées comme pertinentes que lorsqu’elles étaient combinées avec des études sur des humains ou des rongeurs remplissant tous les autres critères de recherche. Les études portant exclusivement sur la fibrose, la stéatose, la stéatohépatite et l’hépatite virale sans cirrhose ont été exclues.

Résultats

Des recherches documentaires ont été menées entre le 6 mars et le 16 mai 2021. La stratégie de recherche initiale a abouti à 57 853 résultats généraux, qui ont ensuite été réduits à 1 337 résultats liés à la recherche de drogue. Après avoir exclu les doublons et les articles non pertinents et en suivant les critères d’inclusion et d’exclusion susmentionnés, les résumés de 351 publications ont été identifiés et examinés pour les études évaluant l’innocuité, l’efficacité et les mécanismes thérapeutiques des agents pharmacologiques ayant des effets anti-inflammatoires dans la cirrhose. Seize autres articles ont été trouvés lors d’une recherche manuelle dans les listes de références et les bibliographies (Figure 1, Diagramme de flux d’essai). https://www.frontiersin.org/files/Articles/718896/fmed-08-718896-HTML/image_m/fmed-08-718896-g001.jpgFigure 1. Organigramme de l’essai.

Les 275 articles restants ont été exclus en raison de leur intérêt principal pour la fibrose, sans mention de la cirrhose ou en raison d’un manque d’investigations sur les voies inflammatoires ou antioxydantes. Soixante-seize publications ont été jugées pertinentes pour la question de recherche telle qu’évaluée par les auteurs (SM, NK et TMK). Parmi celles-ci, 27 études ont exploré les effets cliniques des anti-inflammatoires inclus dans les études sur l’homme sans se concentrer particulièrement sur les marqueurs anti-inflammatoires, et ceux-ci ont été exclus (voir le tableau supplémentaire 2). Quarante-deux études ont exploré les mécanismes anti-inflammatoires potentiels des médicaments dans des modèles animaux, et sept études ont exploré ces mêmes mécanismes médicamenteux chez l’homme. Les tableaux 1A, B répertorient les études incluses. Les agents ont été évalués en fonction de leurs mécanismes de voie.

Tableau 1A. Études humaines (N = 7). https://www.frontiersin.org/files/Articles/718896/fmed-08-718896-HTML/image_m/fmed-08-718896-t001.jpgTableau 1B. Études sur les rongeurs (N = 42). Voir article original.

Médiateurs anti-inflammatoires

Douze médiateurs anti-inflammatoires différents agissant sur plusieurs voies ont été évalués dans 30 études animales et cinq études humaines. Les cytokines étaient le plus souvent utilisées comme marqueur de l’inflammation. Les cytokines sont des peptides régulateurs libérés par les cellules activées et agissent comme des médiateurs cruciaux dans les troubles immunitaires et inflammatoires. De plus en plus de preuves confirment le rôle majeur de plusieurs cytokines dans les maladies du foie (Figure 2) (66). Les agents suivants interféreraient avec le système immunitaire, avec des effets bénéfiques potentiels: célécoxib (25-29, 67), aspirine (30, 31), étanercept (32), curcumine (33-39), kahweol (40, 41 ), pentoxifylline (42, 68), diosmine (42–44), sel d’arginine de glycyrrhizine (45), statines (18, 19, 46–50), emricasan (20–22, 51, 69) et lanifibranor (52) et agoniste du récepteur formayl 2 – WKYMVm (53). De plus, 27 études humaines avec diverses méthodologies ont étudié les mécanismes mais n’ont pas rapporté de paramètres anti-inflammatoires.

Célécoxib

Le célécoxib est un inhibiteur de la cyclooxygénase-2 (COX-2) utilisé dans le traitement de l’arthrite (70, 71). La COX-2, une enzyme exprimée en raison de l’inflammation, est augmentée dans la muqueuse endothéliale vasculaire inflammatoire et exprimée par les cellules de Kupffer dans le foie cirrhotique (72, 73). Le célécoxib a des effets anti-inflammatoires pour soulager les complications de la cirrhose et réduire l’hypertension portale dans plusieurs études chez le rat (25-29, 67). Le célécoxib a été administré pour prévenir la cirrhose dans des modèles animaux expérimentaux où la cirrhose a été induite par des injections péritonéales de thioacétamide (TAA). Cependant, aucune étude humaine avec des paramètres anti-inflammatoires n’a été réalisée avec le célécoxib.

Aspirine

L’aspirine est un inhibiteur de la COX qui agit sur le facteur nucléaire kappa B (NFkB), qui transcrit les molécules d’adhésion dans les cellules endothéliales et les cellules musculaires lisses vasculaires, qui affectent l’adhérence des macrophages et des lymphocytes T (30). De plus, l’aspirine peut renforcer l’inhibition de la croissance induite par l’interféron-α et l’apoptose dans le CHC (74), mais peu d’études ont étudié l’aspirine comme traitement unique de la cirrhose. Chez les rats atteints de cirrhose induite par le TAA, l’aspirine réduit nettement la fibrogenèse avec une amélioration macroscopique et histologique du tissu hépatique par rapport aux témoins (30, 31). Bien que les biomarqueurs de l’inflammation n’aient pas été évalués dans ces études (30), les taux de bilirubine sérique étaient significativement plus faibles chez les rats cirrhotiques traités à l’aspirine que chez les rats cirrhotiques non traités (31). Jusqu’à présent, aucune étude humaine sur l’aspirine en tant que traitement de l’inflammation n’a étudié des biomarqueurs moléculaires ou anti-inflammatoires spécifiques ou des cascades d’inflammation. Les paramètres cliniques étudiés sont répertoriés dans le tableau supplémentaire 2 (75–77).

Étanercept

Le TNF-α est une cytokine produite dans les cellules immunitaires et il a été démontré que la signalisation hépatique via le récepteur TNF-R1 est essentielle à la régénération du foie (78). Le TNF-α active la voie NFkB, qui médie les effets protecteurs et anti-apoptotique mais initie également la transcription des gènes médiateurs inflammatoires (79). Cependant, le TNF-α est également un médiateur pro-inflammatoire capable d’induire l’apoptose et la destruction du foie (79). L’étanercept est un antagoniste du TNF-α et un médicament approuvé pour les maladies auto-immunes, par exemple les maladies inflammatoires de l’intestin et la polyarthrite rhumatoïde. Une seule étude chez le rat (32) a révélé que les niveaux de TNF-α étaient neutralisés combinés à une expression significativement plus faible de TNF-R1 par exposition à l’étanercept. Étonnamment, une étude rétrospective de patients atteints de diverses maladies liées au système immunitaire recevant des inhibiteurs du TNF-α a révélé un risque accru de développer une cirrhose. Les voies immunologiques n’ont pas été évaluées plus avant et ses critères d’évaluation sont répertoriés dans le tableau supplémentaire 2 (80). https://www.frontiersin.org/files/Articles/718896/fmed-08-718896-HTML/image_m/fmed-08-718896-g002.jpg Figure 2. Cytokines dans les maladies du foie. Réponses inflammatoires sur diverses lésions hépatiques et cibles potentielles d’agents anti-inflammatoires. COX-2, cyclooxygénase-2 ; IL, interleukine; LPS, lipopolysaccharide ; NFkB, facteur nucléaire-kB ; STAT3, transducteur de signal et activateur 3 ; TGF, facteur de croissance transformant ; TNF, facteur de nécrose tumorale.

Curcumine

La curcumine est un dérivé du curcuma, qui semble avoir des effets anti-inflammatoires, antioxydants et anticancérigènes (81). La curcumine a un effet croissant sur les molécules de signalisation du facteur nucléaire érythroïde 2 lié au facteur 2 (Nrf-2), Nrf2-NFkB (mesuré en ARNm) et sur l’expression des protéines (34), et une diminution des cytokines TGF-1β et TNF- α et dans IL-10 (33). De plus, la curcumine réduit les niveaux d’alanine aminotransférase (ALT) chez les hamsters et les rats atteints de cirrhose induite par le CCl4 (33, 35). La curcumine peut également réduire l’expression de l’actine des muscles lisses α (α-SMA), un marqueur phénotypique de l’activation des HSC, et de la COX-2 associée au lactulose (35). De plus, la curcumine augmente la SIRT3, une sirtuine jouant un rôle central dans l’oxydation des acides gras et la réduction des espèces réactives de l’oxygène cellulaire (ROS) dans le foie, qui est diminuée chez les rats cirrhotiques (36). De plus, l’expression de l’ARNm des molécules de signalisation AMPK, CPT-1A, IDH2 et MnSOD a été augmentée par la curcumine, indiquant une réduction du stress oxydatif.

Il a été constaté que la curcumine réduisait les expressions protéiques de eNOS, COX-2, VEGF, p-VEGFR2 et p-Erk chez les rats cirrhotiques (37). L’impact de la curcumine sur les marqueurs inflammatoires a été étudié par Cai et al. (38) et par Hernández-Aquino et al. (39) (tableau complémentaire 3b). La curcumine a semblé diminuer les niveaux de cytokines inflammatoires en aval liées au LPS-TLR4 dans le foie, en particulier le TNF-α, l’IL-1β, l’IL-6 et le CINC-1/IL-8. Les diminutions ont été médiées par une diminution des niveaux de LPS et une inflammation innée dans le groupe traité à la curcumine, non pas en raison d’une diminution de l’absorption du LPS, mais d’une clairance et d’une détoxification accrues du LPS dans le foie (38). De plus, la restauration de MMP-9, MMP-2, MMP-13m NFkB, IL-1, IL-10, TGF-β, facteur de croissance du tissu conjonctif (CTGF), collagène, α-SMA et Smad3+7 a également été induite par la curcumine ainsi qu’une diminution des cellules étoilées hépatiques activées (39).

Dans l’ensemble, la curcumine semble diminuer les réponses inflammatoires, améliorer la fibrose et l’hypertension portale et atténuer la circulation hyperdynamique splanchnique au moins en partie en induisant une vasoconstriction par inhibition de l’eNOS et en diminuant l’angiogenèse mésentérique via le blocage du VEGF. Chez l’homme, un récent essai contrôlé par placebo en double aveugle a démontré les effets de la curcumine par rapport au placebo sur la gravité de la maladie dans la cirrhose. Cependant, les effets anti-inflammatoires spécifiques n’ont pas été abordés chez l’homme, voir le tableau supplémentaire 2 (82).

Kahweol

La réponse inflammatoire induite par le LPS est un moteur crucial de l’inflammation systémique, probablement causée par la translocation bactérienne des PAMP et des DAMP de l’intestin vers la circulation sanguine (6). Le transducteur de signal LPS active NFkB. Le transducteur et activateur de signal 3 (STAT3) est un autre facteur transcriptionnel impliqué dans la voie NFkB. L’inhibition de ces deux facteurs pourrait réduire les réponses inflammatoires (83). Kahweol est un composé de grains de café spécifique au café qui présente des propriétés anti-cancérigènes, anti-tumorales progressives et anti-inflammatoires (84), probablement via l’affection de la signalisation NFkB et STAT3. Seo et al. ont étudié l’effet antifibrotique et anti-inflammatoire du kahweol sur les cellules de Kupffer et les hépatocytes du foie de souris in vitro (40). Kahweol s’est avéré limiter la production d’IL-1α, IL-1β, IL-6 et TNF-α ont été réduits. De plus, cet effet inhibiteur était associé à la régulation à la baisse du phosphore-NFkB et de STAT3 stimulés par le LPS.

Arauz et al. (41) ont étudié les effets du café chez des rats atteints de cirrhose induite par le TAA. Le café a empêché une perte de poids et limité l’augmentation de l’ALT, de la phosphatase alcaline (ALP) et de la gamma-glutamyl transpeptidase observée chez les témoins cirrhotiques. De plus, une amélioration significative des cytokines TGF-β, CTGF, IL-10 et MMP-13 et des pointes α-SMA a évolué lorsque le café a été administré aux rats. Ainsi, les mécanismes d’action sont probablement associés à des propriétés antioxydantes, principalement à la capacité du café à bloquer l’élévation de la cytokine profibrogène (TGF-β) et de l’effecteur CTGF en aval. Aucune étude d’intervention chez l’homme n’a encore exploré les effets anti-inflammatoires des dérivés du café chez les patients atteints de cirrhose. Cependant, une étude épidémiologique est répertoriée dans le tableau supplémentaire 2.

Pentoxifylline and Diosmin

La pentoxifylline est un inhibiteur non sélectif de la phosphodiestérase, qui présente une activité vasodilatatrice sur les vaisseaux sanguins hépatiques périphériques (85). De plus, il exerce une régulation anti-inflammatoire en affectant les expressions du TGF-β et de la métalloprotéinase-1 (TIMP-1). Des effets bénéfiques chez les humains atteints d’une maladie hépatique avancée ont été décrits (68) et les effets régulateurs de l’activité des cellules stellaires hépatiques seraient liés à la voie de signalisation Hedgehog (86). La pentoxifylline a réduit les taux de complications des infections bactériennes, de l’insuffisance rénale, de l’encéphalopathie hépatique et des saignements gastro-intestinaux. Des niveaux de base de TNF-α plus élevés ont été associés au développement de complications en l’absence de pentoxifylline.

La diosmine est une flavone naturelle signalée pour prévenir les lésions hépatiques par inhibition de l’activation de NFkB (42, 87). Chez les rats cirrhotiques induits par la ligature des voies biliaires (BDL), la pentoxifylline et la diosmine ont augmenté la survie (42). Un effet cicatrisant sur les marqueurs fibrotiques HYP et TGF-β et les marqueurs oxydatifs malondialdéhyde (MDA), SOD (superoxyde dismutase), glutathion réductase (GSH) et nicotinamide adénine dinucléotide phosphate (NADPH) oxydase a favorisé à la fois l’activité de la diosmine et de la pentoxifylline ; voir le tableau supplémentaire 3c. La diosmine a été étudiée en tant que traitement unique et en association avec le sildénafil (43). Les résultats concernant ses effets anti-inflammatoires et antioxydants sont décrits dans le tableau supplémentaire 3c. Une étude sur des rongeurs (44) a confirmé les résultats de la régulation de l’activation du TNF-α et du NFkB chez des rats traités avec de l’éthanol et de la diosmine pendant 4 semaines. Le TNF-α était significativement élevé par l’éthanol et remis par l’ajout concomitant de diosmine. NFkB a été étudié par coloration immunohistochimique et l’expression a été nettement supprimée dans les groupes de rats traités à la diosmine. Dans un essai clinique, 329 patients atteints de cirrhose ont été randomisés pour recevoir un traitement par pentoxifylline ou un placebo pendant 6 mois (68).

Sel d’arginine de glycyrrhizine

La glycyrrhizine est le principal constituant actif de la racine de réglisse. La réglisse a des effets anti-inflammatoires, spasmolytiques, laxatifs, antidépresseurs, antiulcéreux et antidiabétiques (88). Cette affirmation est étayée par une étude sur des rongeurs dans laquelle la glycyrrhizine associée à l’arginine semble protéger contre l’hyperammoniémie et l’encéphalopathie hépatique (45). Les effets thérapeutiques de la glycyrrhizine et de l’arginine modifient également les niveaux de cytokines (TGF-β1 et TNF-α), les anticorps contre les métalloprotéinases matricielles et les marqueurs biochimiques de la fonction hépatique. Dans cette étude, des changements significatifs ont été trouvés pour recommander un traitement au sel d’arginine de glycyrrhizine. Les résultats de ses effets anti-inflammatoires sont répertoriés dans le tableau supplémentaire 3d.

Statines

Les statines ont prouvé des propriétés antioxydantes, antiprolifératives et anti-inflammatoires et une capacité à améliorer la fonction endothéliale et à stimuler la néoangiogenèse (89, 90). Les statines diminuent l’adhésion des leucocytes aux cellules endothéliales et épithéliales en inhibant l’expression et la liaison de l’intégrine LFA-1 et de la molécule d’adhésion intercellulaire 1 (ICAM-1). Les statines diminuent également la production de NFkB, et donc la libération de cytokines pro-inflammatoires telles que le TNF-α et l’IL-6. Cette chaîne d’action bloque les protéines essentielles nécessaires à la formation des radeaux lipidiques et à l’activation et à la croissance des cellules immunitaires. Ils réduisent également les niveaux de stress oxydatif (91).

Des études chez des rats atteints de cirrhose induite expérimentalement ont montré que les statines peuvent prévenir les complications dérivées de l’ACLF induites par le LPS et prolonger la survie. De plus, les statines augmentent la fonction sinusoïdale hépatique, protègent contre le dysfonctionnement endothélial et les effets néfastes des agressions hypovolémiques. Enfin, les statines normalisent les marqueurs inflammatoires lors d’événements critiques tels que l’ACLF et l’hypovolémie (46, 47) (voir le tableau supplémentaire 3e). Un effet significatif de la simvastatine, lorsqu’elle est associée à des cellules souches mésenchymateuses dérivées de la moelle osseuse, a été démontré avec une amélioration de la fibrose (50) (voir le tableau supplémentaire 3e). L’atorvastatine réduit également la pression portale chez les rats cirrhotiques CCl4 (48). Dans les échantillons de foie cirrhotique humain, les niveaux d’ARNm du doigt de zinc-2 (Gli-2) de la famille des oncogènes Sonic hedgehog (Shh) et des oncogènes associés au gliome, ainsi que l’expression des protéines, augmentent (48). Le traitement à l’atorvastatine a significativement régulé à la baisse les composants hedgehog Shh et Gli-2 dans les modèles BDL et CCl4-cirrhotique. De même, les niveaux d’ARNm d’α-SMA, de collagène-1 et de vimentine ont diminué après le traitement à l’atorvastatine.

En revanche, une étude chez le rat n’a pas trouvé d’amélioration significative de la cirrhose lors d’un traitement par l’atorvastatine ou la rosuvastatine (49). La simvastatine peut augmenter le débit hépato-splanchnique des produits à base d’oxyde nitrique chez les patients atteints de cirrhose, améliorant ainsi l’hypertension portale (18). Des essais cliniques randomisés ont étudié les effets bénéfiques sur les résultats cliniques tels que la fonction hépatique, la récidive des varices œsophagiennes et la survie (92–94), et un essai multicentrique en cours étudie également de manière prospective la réduction potentielle de la décompensation hépatique (19). Cependant, aucune étude humaine n’a exploré en détail les mécanismes anti-inflammatoires; par conséquent, les effets thérapeutiques des statines ne sont pas encore complètement compris [pour les paramètres cliniques dans les études sur l’homme (90, 92-104), voir le tableau supplémentaire 2].

Emricasan

Emricasan est un inhibiteur oral de pan-caspase qui atténue l’impact sur l’apoptose, l’inflammation et la fibrose dans des modèles animaux de lésions hépatiques. Des études ont démontré comment l’emricasan peut inhiber la mort des cellules hépatiques avec des réductions de l’activité de la caspase-3 chez les rats cirrhotiques CCl4, tout en réduisant l’hypertension portale et le dysfonctionnement microvasculaire hépatique chez les rats atteints de cirrhose avancée (51). De plus, trois études humaines ont exploré les effets cliniques de l’emricasan (20–22). Frenette et al. (20) ont administré de l’emricasan 25 mg dans un essai randomisé, en double aveugle, contrôlé par placebo. Emricasan a réduit la kératine-18 clivée (un marqueur de l’apoptose) par rapport au placebo, bien que de manière insignifiante, mais les taux de caspase 3/7 et de flCK-18 ont diminué de manière significative. Garcia-Tsao et al. (21) ont également constaté des réductions de la cytokératine 18 clivée et de la caspase-3/7 après 28 jours de traitement par l’emricasan chez 22 patients cirrhotiques. Le tableau supplémentaire 3 répertorie les résultats des marqueurs anti-inflammatoires pour les études sur les rongeurs.

Un essai clinique récent concernant la cirrhose liée à la NASH par les mêmes auteurs (22) a montré les mêmes profils de biomarqueurs décrits ci-dessus. Cependant, les effets cliniques sur la biochimie du foie et l’hypertension portale n’ont pas été observés chez les patients atteints de cirrhose décompensée liée à la NASH (69) (voir le tableau supplémentaire 2).

Lanifibranor

Les récepteurs activés par les proliférateurs de peroxysomes (PPAR) sont présents chez les mammifères sous trois isoformes, et toutes les isoformes jouent un rôle dans le maintien de la fonction hépatique (105). Le lanifibranor, agoniste pan-PPAR, a montré son potentiel pour atténuer les modèles de lésions hépatiques légères et de stéatose hépatique non alcoolique. Nous avons trouvé une étude des effets de lanifibranor sur des rats cirrhotiques et sur des cellules hépatiques humaines cirrhotiques in vitro. Lanifibranor a amélioré la fibrose et l’hypertension portale chez les rats en plus d’effets anti-inflammatoires significatifs (tableau supplémentaire 3f) et a montré des résultats prometteurs dans les cellules hépatiques humaines. Cependant, aucun essai clinique humain n’a été trouvé.

Agoniste du récepteur formyle peptide 2—(WKYMVm)

L’hexapeptide WKYMVm (Trp-Lys-Tyr-Met-Val-D-Met) est un ligand du récepteur formyl-peptide 2. Il présente des propriétés anti-inflammatoires et angiogéniques dans de multiples modèles de maladies. Le peptide WKYMVm améliore le remodelage vasculaire et inhibe la fibrose dans un modèle d’insuffisance hépatique chez le rat (53) (voir le tableau supplémentaire 3g). En outre, WKYMVm améliore la fonction hépatique en régulant à la hausse l’expression des marqueurs de la fonction hépatique. Ces données suggèrent que le peptide WKYMVm module la fonction hépatique et la régénération vasculaire dans l’insuffisance hépatique des rongeurs. Aucun essai sur l’homme n’est décrit.

Antioxidants

Dix-sept études animales ont étudié les effets de cinq médiateurs antioxydants différents, dont trois ont été étudiés dans des études humaines avec des paramètres cliniques : la curcumine (33-38), la pentoxifylline (42, 68) et la diosmine (42-44) sont décrites ci-dessus. La mitoquinone (54, 55) et la silymarine (56–60, 106) sont décrites ci-dessous. Les agents antioxydants semblent atténuer la fibrose hépatique chez les modèles de rongeurs (107). Le mécanisme est en partie dû à l’influence sur l’activation des cellules étoilées hépatiques, qui induisent le dépôt de matrice extracellulaire (Figure 3). Plusieurs agents ont des effets antioxydants supposés démontrés par des mesures de réactifs tels que MDA, NADPH oxydase, Nrf2, Keap 1, NFkB et IkB. La NADPH oxydase est fortement exprimée par les cellules de Kupffer et génère de grandes quantités de ROS au début des lésions hépatiques. De plus, les cellules étoilées hépatiques semblent également exprimer des ROS générant du NADPH, qui interviennent dans les facteurs fibrogéniques (107).

https://www.frontiersin.org/files/Articles/718896/fmed-08-718896-HTML/image_m/fmed-08-718896-g003.jpg Figure 3. Mécanismes antioxydants. Illustration simplifiée des mécanismes oxydatifs et antioxydants affectant les cellules hépatiques. α-SMA, actine musculaire α-lisse; HSC, cellule étoilée hépatique ; NADPH, nicotinamide adénine dinucléotide phosphate; ROS, espèces réactives de l’oxygène.

Mitoquinone

Le dysfonctionnement mitochondrial semble jouer un rôle crucial dans le développement et la progression de la cirrhose du foie. Les foies cirrhotiques présentent une augmentation des ROS produites par les mitochondries. La mitoquinone est un antioxydant ciblant les mitochondries, qui pourrait soulager les effets néfastes des ROS dans les foies cirrhotiques (54, 55). Deux études chez le rat ont évalué les effets du traitement par la mitoquinone. Ainsi, Vilaseca et al. (54) ont trouvé un effet soulageant sur l’hypertension portale chez le rat, ainsi que sur la fibrose et les marqueurs oxydatifs. La teneur en superoxyde mitochondrial était significativement plus élevée dans les cellules hépatiques étoilées et les hépatocytes des rats cirrhotiques, mais pas dans les cellules sinusoïdales ou de Kupffer par rapport aux rats non cirrhotiques, et cet effet semblait être dose-dépendant. Des effets similaires sur l’activité des CSH ont été trouvés dans des cellules hépatiques humaines exposées à la mitoquinone. La mitoquinone a également réduit le stress oxydatif et réduit la pression portale et la résistance vasculaire intrahépatique chez les rats atteints de cirrhose induite par le CCl4. La mitoquinone a entraîné une réduction significative de la fibrose hépatique, ce qui indique une valeur clinique potentielle de ce médicament. L’activité des cellules étoilées hépatiques a été évaluée par l’expression des gènes profibrogéniques et de l’α-SMA, et les deux marqueurs ont été significativement réduits chez les rats cirrhotiques. Enfin, les marqueurs inflammatoires dans des modèles in vivo ont été mesurés et iNOS, IL-6 et IL-1β ont tous été réduits de manière significative.

Dans une autre étude sur des rats BDL, Turkseven et al. (55) ont également étudié les effets de la mitoquinone. Le traitement par la mitoquinone a empêché l’inflammation, la nécrose des hépatocytes et la progression de la fibrose. Initialement, la ligature des voies biliaires des rats a entraîné une augmentation de l’expression génique (Qr-PCR) des marqueurs inflammatoires et oxydants, et ces réponses ont été réduites par la mitoquinone. Le collagène de type col1α1, le TGF-β, le TNF-α, l’IL-6, l’IL-1β et les niveaux de TNF-α circulatoire ont tous été réduits. De plus, la mitoquinone a réduit la carbonylation des protéines, un indicateur de modification oxydative irréversible des protéines, chez les rats cirrhotiques. La mitoquinone a normalisé l’expression génique de l’antioxydant mitochondrial Mn-SOD, Cu/ZnSOD et de la catalase altérée par la cirrhose. L’expression de la protéine parkine dans les mitochondries est un indicateur de l’élimination des mitochondries dysfonctionnelles par autophagie. L’expression de la protéine parkine diminue dans la cirrhose mais augmente chez les rats traités avec la mitoquinone (55). La mitoquinone semble posséder à la fois des effets anti-inflammatoires et antioxydants dans les cellules humaines et les modèles de rongeurs, mais aucune étude humaine n’a encore vérifié ces effets.

Silymarine

La silymarine est un extrait de la plante Silybum marianum (chardon-Marie), dont le composé principal est la silybine. La silymarine a une faible biodisponibilité et manque de solubilité dans l’eau. La silybine agit en désactivant les signaux pro-inflammatoires dérivés de l’activation du NFkB (qui est impliqué dans l’induction du TNF-α, de l’IL-1, de l’IL-6 et du GM-CSF) et induit l’apoptose. L’activité antioxydante de la silymarine est liée à son élimination des radicaux libres et à l’inhibition de la peroxydation des lipides, comme démontré in vivo et in vitro (108). Nous avons identifié cinq études sur des rongeurs qui ont évalué les effets de la silymarine dans des modèles de cirrhose.

Ali et al. (58) ont étudié les effets modulateurs de la curcumine, de la silybine-phytosome et de l’acide alpha-R-lipoïque chez des rats atteints de cirrhose induite par le TAA. Le TAA a été donné en même temps que l’intervention. L’appauvrissement en glutathion, le dépôt de collagène, l’activité de la métalloprotéinase matricielle-2, les niveaux de TGF-β1 et l’expression des gènes de la protéine de choc thermique-47 – tous des facteurs supposés être impliqués dans le développement de la cirrhose – ont été partiellement bloqués par la thérapie combinée avec la curcumine, la silybine- phytosome et acide alpha-R-lipoïque. Ainsi, la thérapie a augmenté la génération de ROS et inhibé l’activation des cellules étoilées hépatiques, prévenant ainsi la cirrhose du foie. Zaid et al. (56) ont également évalué les effets de la silymarine sur des rats atteints de cirrhose induite par le TAA. L’activité antioxydante a été réduite car la superoxyde dismutase (SOD) et le GSH étaient faibles, et la MDA (mesure de la peroxydation lipidique) et la catalase ont été augmentées avant le début du traitement. À l’inverse, la silymarine a restauré l’activité de la SOD et du GSH, du MDA et de la catalase. Un effet synergique possible entre la silymarine et le lactulose a été étudié dans un modèle de rat cirrhotique (57) sans différence significative entre les groupes de traitement en fonction de leurs scores nécro-inflammatoires.

Une combinaison de silymarine et de l’acide aminé taurine a été évaluée dans une étude sur la cirrhose induite par le CCl4 (59). La silymarine seule et la silymarine avec taurine ont restauré les niveaux de TBARS (substances réactives à l’acide thiobarbiturique), et le traitement combiné a réduit de manière significative les niveaux de NO et l’activité NOS. Cependant, les activités de la SOD, de la glutathion peroxydase (GPx) et de la glutathion réductase (GR) ont augmenté de manière significative dans tous les groupes de traitement. De plus, la glutathion-S-transférase (GST) et le glutathion réduit (GSH) ont augmenté chez les rats traités avec la silymarine seule ou le traitement combiné. Les cytokines TNF-α, TGF-β1, IL-6 et les protéines leptine et résistine ont augmenté dans le modèle cirrhotique, tandis que l’adiponectine a diminué. Les trois traitements ont réduit le TGF-β1, l’IL-6 et la leptine, mais seules la taurine et la combinaison taurine et silymarine ont réduit le TNF-α et la résistine.

Enfin, une combinaison de cellules stromales dérivées de la moelle osseuse et de silymarine a amélioré les dommages aux tissus hépatiques dans un modèle de rat cirrhotique CCl4 grâce à des activités immunorégulatrices. Cependant, les marqueurs antioxydants n’ont pas été étudiés dans cette étude (60). Une seule étude de cohorte sur la silymarine a été réalisée chez l’homme. Fathalah et al. (106) ont étudié les effets de la silymarine à forte dose chez des patients cirrhotiques décompensés par le virus de l’hépatite C chronique (VHC). Les principaux résultats ont amélioré les paramètres biochimiques du foie et le score de Child-Pugh ; cependant, aucun marqueur oxydatif n’a été étudié (voir le tableau supplémentaire 2).

Microflore intestinale et voie LPS

La dysbiose intestinale avec translocation des bactéries et du produit bactérien pourrait jouer un rôle dans le développement des complications de la cirrhose. L’atténuation de la dysbiose dans la flore intestinale des patients atteints de cirrhose et les effets sur le LPS soutiennent que la lutte contre les mécanismes anti-inflammatoires est bénéfique dans la cirrhose. Notre recherche a abouti à quatre études animales, deux études humaines rapportant des effets sur les marqueurs inflammatoires et deux études humaines où seuls les paramètres cliniques ont été pris en compte. Ainsi, nous avons trouvé trois thérapies différentes de modulation microbienne intestinale, à savoir la transplantation de microbiote fécal (23, 24, 62, 109), le kahweol (40, 41) tel que décrit précédemment et l’artésunate (63).

Transplantation de microbiote fécal (FMT)

Parmi les mécanismes pertinents, une augmentation du LPS entraîne des dommages aux hépatocytes, ce qui stimule les macrophages hépatiques et augmente la libération d’IL-1, IL-6 et TNF-α. Plusieurs voies sont impliquées dans la promotion ou la neutralisation de l’inflammation chronique (40). Par exemple, le kahweol affecte la voie LPS dans l’intestin, entraînant des effets anti-inflammatoires (décrits ci-dessus). Liu et al. ont exploré les effets de la transplantation de microbiote fécal (FMT) d’humains sur des souris exemptes de germes et conventionnelles (62). Ils ont trouvé une neuroinflammation et une activation microgliale et une dysbiose réduites 15 jours après l’exposition à la FMT, alors que l’inflammation du foie n’était pas affectée. Des degrés plus élevés de neuroinflammation chez les souris, quel que soit leur état de cirrhose, ont été observés avec la colonisation microbienne fécale par des humains atteints de cirrhose par rapport aux souris exposées à la colonisation par des humains en bonne santé. Bajaj et al. ont étudié l’innocuité des gélules de FMT chez des patients atteints de cirrhose et d’EH récurrente dans un essai de phase 1 randomisé et contrôlé par placebo (23).

La FMT a amélioré la diversité de la muqueuse duodénale, la dysbiose et l’expression du peptide antimicrobien duodénal (AMP) et de la protéine de liaison aux lipopolysaccharides réduite (LBP). Par la suite, un essai a été construit sur la base des mêmes cohortes élucidant les effets sur les marqueurs inflammatoires : protéine de liaison à l’IL-6 et au LPS, et acides biliaires dans le sérum (24). Quatre semaines de FMT ont diminué les taux sériques d’IL-6 et de LBP par rapport au groupe placebo. Dans le groupe FMT, une plus grande déconjugaison et une formation secondaire d’acides biliaires ont été trouvées. Dans une étude en cours, Woodhouse et al. (109) évaluent actuellement si la FMT chez les patients atteints de cirrhose avancée est efficace, faisable et sûre.

Artésunate

L’artésunate est un extrait de l’herbe chinoise “Artemisia annua”, qui a toujours été utilisée comme médicament antipaludéen. On suppose qu’il affecte la translocation bactérienne pathologique (63), qui est considérée comme le principal moteur de l’infection spontanée chez les patients atteints de cirrhose (110). Par exemple, un traitement antibactérien prophylactique est souvent indiqué chez les patients présentant une ascite et un risque de péritonite bactérienne spontanée. Une seule étude a évalué les effets de l’artésunate chez des rats atteints de cirrhose induite par le CCl4 (63). Ainsi, l’artésunate a diminué l’IL-6 et le TNF-α dans le foie cirrhotique aux semaines 4, 6 et 8, indiquant un effet sur les réponses inflammatoires. La diversité microbienne dans le groupe artésunate, par rapport aux témoins, a été augmentée à la semaine 4 et réduite aux semaines 6 et 8. Les produits d’ADN génomique bactérien sont réapparus chez les rats traités avec l’artésunate après 4 semaines, contrairement aux rats cirrhotiques non traités avec l’artésunate. Aucune bactérie n’a été détectée dans le sang dans les deux groupes. Ainsi, l’artésunate a diminué de manière significative l’occurrence de la translocation bactérienne. Aucune étude humaine n’a encore été menée, mais la première impression des effets de l’artésunate est prometteuse selon l’atténuation des facteurs inflammatoires et de la dysbiose du microbiote intestinal dans la cirrhose.

Désactivation des cellules étoilées hépatiques

Plusieurs des agents thérapeutiques décrits sont supposés avoir de multiples impacts sur différentes voies homéostatiques et physiopathologiques. Par exemple, l’énoxaparine (30, 31, 64, 65, 111) et la tanshinone (61) peuvent avoir des effets qui n’ont pas encore été classés comme mécanismes antifibrotiques directs et ne correspondent pas à un mode d’action anti-inflammatoire ou antioxydant concret.

Énoxaparine

L’énoxaparine a à la fois des effets anticoagulants et antithrombotiques (112). Une étude expérimentale chez le rat a observé une réduction de la prolifération et de l’activation des cellules étoilées hépatiques (30). De plus, il a été démontré que les patients atteints de cirrhose présentent plus fréquemment un état prothrombotique qu’un état hypocoagulant (113, 114). Il a été prouvé que l’énoxaparine réduit la pression portale chez les rats cirrhotiques, impliquant des effets au-delà de l’anti-thrombotique (65). Le traitement à court terme de rats cirrhotiques avec de l’énoxaparine a montré une réduction significative de la teneur en superoxyde, de l’α-SMA et de l’ARNm du pro-collagène I et de la fibrose hépatique. De plus, les niveaux de stress oxydatif étaient plus faibles et la fibrose réduite de 25 % après traitement à l’énoxaparine. Cependant, Fortea et al. (64) n’ont pas trouvé d’amélioration de la fibrose, des paramètres biochimiques, de la dysfonction endothéliale hépatique ou de l’hypertension portale après traitement à l’énoxaparine des rats cirrhotiques. Au contraire, la dose thérapeutique d’énoxaparine a diminué la survie des rats atteints de cirrhose induite par le CCl4. L’énoxaparine comme traitement préventif de la thrombose veineuse porte chez les patients atteints de cirrhose Child-Pugh B-C a été suggérée par les auteurs d’une étude (111), favorisant l’énoxaparine par rapport à l’absence de traitement. Il a été trouvé sûr et préventif pour la thrombose chez 34 patients traités pendant 48 semaines. De plus, la fréquence des décompensations a diminué et la survie a augmenté dans le groupe énoxaparine.

Tanshinone

Salvia miltiorrhiza (S. miltiorrhiza) est une herbe chinoise composée de plusieurs composés. La tanshinone est extraite de S. miltiorrhiza et est décrite comme un antioxydant naturel aux effets hépatoprotecteurs, antifibrotiques et anticancéreux. De plus, il est censé induire la prolifération et la différenciation des cellules souches (115). Une étude sur un seul rat a étudié les effets dans un modèle cirrhotique (61), où la tanshinone améliorait la lésion histologique, les tests sérologiques et augmentait l’expression de marqueurs indiquant des cellules souches nouvellement proliférées. Ces effets semblaient être causés par la promotion de la prolifération et de la différenciation des cellules souches hépatiques endogènes. Aucun essai humain n’a été trouvé.

Discussion

Dans la présente revue, nous avons identifié et exploré d’éventuels agents anti-inflammatoires et antioxydants en tant que candidats médicaments potentiels pour interférer avec les processus de fibrogenèse et ainsi atténuer le développement et la perpétuation des complications de la cirrhose. Dans des modèles de rongeurs cirrhotiques, nous avons trouvé des indices prometteurs d’effets anti-inflammatoires et antioxydants bénéfiques de l’inhibiteur de la COX-2, le célécoxib, l’aspirine, la curcumine, le kahweol, la pentoxifylline, la diosmine, les statines, l’emricasan et la silymarine. Peu d’indices d’effets de l’étanercept, du sel d’arginine de glycyrrhizine et de la mitoquinone ont été trouvés. De plus, la FMT est un domaine en pleine croissance avec le potentiel de soulager la cirrhose par une régulation bénéfique de la flore intestinale.

La principale limite de la présente revue est le manque d’études humaines évaluant les agents anti-inflammatoires dans la cirrhose. Le manque rend difficile l’évaluation de l’efficacité clinique des agents discutés et la comparaison des effets entre différentes études. La littérature propose de nombreuses études expérimentales chez les rongeurs où de multiples effets bénéfiques sur la cirrhose concernant la fibrose sont rapportés (voir tableau complémentaire 3). Cependant, l’extrapolation d’études animales expérimentales dans un cadre cliniquement pertinent est problématique. Néanmoins, plusieurs agents différents ont été identifiés, et nombre d’entre eux ont montré des mécanismes et des effets potentiels de guérison ou de soulagement dans les modèles appliqués. Cependant, la plupart des études sur les rongeurs ne sont pas comparables car la méthode d’induction de la cirrhose diffère en particulier. Les procédures, la durée et le moment de l’ajout des agents expérimentaux diffèrent nettement.

Il existe d’importants résultats contradictoires pour l’énoxaparine, les statines et l’étanercept. En particulier, une étude humaine portant sur l’étanercept a révélé des effets nocifs importants (80). Une étude chez le rat portant sur les statines (49) et l’énoxaparine (64) n’a montré aucun effet d’intervention. La curcumine semble prometteuse dans les essais cliniques sur les rongeurs et les humains. Des effets anti-inflammatoires et antifibrotiques, ainsi qu’un impact positif sur la pression portale et l’hémodynamique chez les rongeurs combinés à des résultats cliniques favorables chez les patients cirrhotiques, indiquent un potentiel convaincant (33–38, 82). La curcumine a également des effets potentiels sur la qualité de vie (116). La silymarine est également étudiée dans un cadre différent et montre des effets anti-inflammatoires et antioxydants potentiels chez les rongeurs et une amélioration clinique chez les patients. Emricasan a montré des effets apaisants prometteurs dans des études sur des rongeurs et des humains sur plusieurs paramètres. Des effets cliniques prometteurs (20–22) sont montrés, mais seules la caspase et la flCK-18 sont mesurées comme marqueurs anti-inflammatoires. Par conséquent, les mécanismes sont encore largement inexplorés et de futures études avec des paramètres inflammatoires et cliniques sont justifiées.

Plusieurs études rétrospectives ont suggéré que les statines peuvent améliorer la mortalité dans la cirrhose (90, 95, 103). Des études cliniques sur les effets hypertensifs anti-portaux des statines ont fourni des résultats encourageants dans des essais récemment publiés (93, 97, 102, 117), tandis que d’autres études ont rapporté un risque réduit de décompensation et de décès (89, 90, 92, 94) , et que les statines pourraient réduire le risque d’infections chez les patients atteints de cirrhose (96). Une étude a également décrit une amélioration de la survie lors d’infections chez des patients cirrhotiques subissant un traitement continu avec des statines (104). Les études humaines explorant les mécanismes anti-inflammatoires dans la cirrhose devraient être fortement encouragées. Les effets anti-inflammatoires des statines semblent avoir une longueur d’avance sur les autres agents concernant les tests dans les essais sur l’homme, principalement en raison de l’effet similaire des statines sur l’hypertension portale (93, 97, 102, 117). De nouvelles recherches impliquent les effets anti-inflammatoires des statines en tant que moteurs clés de la réduction de la pression portale, mais l’impact immunologique doit être exploré plus avant chez l’homme (89, 91).

La dysbiose de la flore intestinale est suspectée comme facteur déclenchant chez les patients cirrhotiques présentant des infections nécessitant un traitement antibiotique. La FMT pourrait s’avérer être un «post-traitement» précieux après une exposition aux antibiotiques, rétablissant l’effet potentiellement nocif des antibiotiques sur la diversité et la fonction microbiennes (118). Les premières études se sont concentrées sur la sécurité et les résultats de la fonction organique dans la cirrhose (23), pertinents dans une entité pathologique complexe. Des études sur la FMT sans antibiotiques préalables sont nécessaires pour évaluer l’impact de la dysbiose intestinale et l’inhibition ou l’atténuation de l’inflammation dans la cirrhose décompensée. De futures études sont attendues (109) dans la recherche d’agents préventifs et traitants de la cirrhose. Très peu d’effets secondaires sont signalés pour la majeure partie des agents décrits, et la sécurité mérite une attention particulière dans les futures enquêtes sur les agents anti-inflammatoires. Seules deux études d’innocuité concernant le célécoxib sont menées (119, 120).

Les essais cliniques en vie réelle explorant les interventions anti-inflammatoires et leur innocuité chez les patients atteints de cirrhose du foie manquent particulièrement dans la littérature. De plus, les données sur la combinaison de marqueurs anti-inflammatoires ou antioxydants et les résultats cliniques sont rares. Les essais cliniques randomisés humains, de préférence contrôlés par placebo, sont la prochaine étape vers l’application clinique d’agents anti-inflammatoires. Comme la plupart des marqueurs d’inflammation sont faciles à prélever par des tests sanguins, cela devrait être possible et réalisable à ajouter aux protocoles cliniques. La thérapie par macrophages autologues est un autre traitement prometteur qui semble sûr (121) ; dont les effets doivent encore être pleinement étudiés. C’est également le cas pour d’autres greffes de cellules autologues, telles que la thérapie par cellules stromales mésenchymateuses (122).

En conclusion, nous recommandons une étude plus approfondie des mécanismes et voies inflammatoires, oxydatifs, microbiologiques et immunologiques responsables de la progression de la maladie dans la cirrhose. Des composés connus et nouveaux ayant des effets cicatrisants potentiels dans la cirrhose sont identifiés et nécessitent une exploration plus approfondie. De manière générale, la littérature recense très peu d’essais cliniques humains sur les aspects, et le besoin d’études est croissant. Les futures études devraient inclure des biomarqueurs anti-inflammatoires et des paramètres cliniques en combinaison pour évaluer les agents immunologiques potentiels dans le traitement de la cirrhose.

Matériel complémentaire

Le matériel supplémentaire de cet article est disponible en ligne à l’adresse : https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fmed.2021.718896/full#supplementary-material

Informations sur le droit d’auteur

Article publié sous les conditions définies par la licence Creative Commons Attribution License CC-BY, qui autorise sans restrictions l’utilisation, la diffusion, et la reproduction sur quelque support que ce soit, sous réserve de citation correcte de la publication originale.

Abbréviations

• ACLF: acute on chronic liver failure • α-SMA: α-smooth muscle actin • ALT, alanine aminotransferase • ALP, alkaline phosphatase. AMP, antimicrobial peptide. • AST: aspartate aminotransferase • BDL, bile duct ligation • CCl4 : carbon tetrachloride. • cCK18: cleaved cytokeratine-18 • COX : cyclooxygenase. • CTGF: connective tissue growth factor • eNOS: endothelial nitric oxide synthase.• flCK18: full-length cytokeratine 18. • FMT, faecal microbiota transplantation • GPx : glutathione peroxidase • GR : glutathione reductase. GSH, glutathione reductase/reduced glutathione. •GST, glutathione-S-transferase. • HBV, Hepatitis B virus • HCC, hepatocellular carcinoma. • HCV : Hepatitis C virus. • HE, hepatic encephalopathy. • HRS : hepatorenal syndrome. • HSC, hepatic stellate cells. • HVPG: hepatic venous pressure gradient. • HYP : hydroxyproline. • ICAM-1 : intercellular adhesion molecule 1 • IL-6 : interleukine-6. • Keap-1 : Kelch-like ECH-associated protein 1. • KLF2: Krüppel-like factor 2 • LDL : low density lipoprotein. • LFA-1 : lymphocyte function-associated antigen 1 • LPS : lipopolysaccharide • MDA : malondialdehyde • measure of lipid peroxidation. • MSCs : mesenchymal stem cells. • NADPH : nicotinamide adenine dinucleotide phosphate • NFkB: nuclear factor-kB • NO: nitrogen oxide. • NOS :  nitrogen oxygen synthase. • Nrf2 : Nuclear factor erythroid 2-realted factor 2 • PARs : protease activated receptors. • PDGF: platelet derived growth factor. • PPARα, peroxisome proliferator-activated receptor-α • RCT : randomised controlled trial. • ROS : reactive oxygen species. • SBP : spontaneous bacterial peritonitis. • SOD : superoxide dismutase • STAT3 : signal transducer and activator 3 • Supp: supplementary. • TAA : thioacetamide • TBARS : thiobarbituric acid reactive substances. • TGF-β, transforming growth factor-β • TNF-α : tumour necrosis factor-α • VEGF : vascular endothelial growth factor • WKYMVm : a hexapeptide.

Voir la publication originale

Kronborg TM, Ytting H, Hobolth L, Møller S and Kimer N (2021). Novel Anti-inflammatory Treatments in Cirrhosis. A Literature-Based Study. Front. Med. 8:718896. doi: 10.3389/fmed.2021.718896

Références

  1. Smith A, Baumgartner K, Bositis C. Cirrhosis: diagnosis and management. Am Fam Physician. (2019) 100:759–70. Google Scholar
  2. Zhang CY, Yuan WG, He P, Lei JH, Wang CX. Liver fibrosis and hepatic stellate cells: etiology, pathological hallmarks and therapeutic targets. World J Gastroenterol. (2016) 22:10512–22. doi: 10.3748/wjg.v22.i48.10512 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  3. Park BJ, Lee YJ, Lee HR. Chronic liver inflammation: clinical implications beyond alcoholic liver disease. World J Gastroenterol. (2014) 20:2168–75. doi: 10.3748/wjg.v20.i9.2168 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  4. Albillos A, Lario M, Álvarez-Mon M. Cirrhosis-associated immune dysfunction: distinctive features and clinical relevance. J Hepatol. (2014) 61:1385–96. doi: 10.1016/j.jhep.2014.08.010 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  5. Koyama Y, Brenner DA. Liver inflammation and fibrosis. J Clin Invest. (2017) 127:55–64. doi: 10.1172/JCI88881 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  6. Simbrunner B, Mandorfer M, Trauner M, Reiberger T. Gut-liver axis signaling in portal hypertension. World J Gastroenterol. (2019) 25:5897–917. doi: 10.3748/wjg.v25.i39.5897 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  7. Reiberger T, Mandorfer M. Beta adrenergic blockade and decompensated cirrhosis. J Hepatol. (2017) 66:849–59. doi: 10.1016/j.jhep.2016.11.001 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  8. Kockerling D, Nathwani R, Forlano R, Manousou P, Mullish BH, Dhar A. Current and future pharmacological therapies for managing cirrhosis and its complications. World J Gastroenterol. (2019) 25:888–908. doi: 10.3748/wjg.v25.i8.888 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  9. Angeli P, Bernardi M, Villanueva C, Francoz C, Mookerjee RP, Trebicka J, et al. EASL clinical practice guidelines for the management of patients with decompensated cirrhosis. J Hepatol. (2018) 69:406–60. doi: 10.1016/j.jhep.2018.03.024 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  10. Thiele M, Albillos A, Abazi R, Wiest R, Gluud LL, Krag A. Non-selective beta-blockers may reduce risk of hepatocellular carcinoma: a meta-analysis of randomized trials. Liver Int. (2015) 35:2009–16. doi: 10.1111/liv.12782 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  11. Thiele M, Wiest R, Gluud LL, Albillos A, Krag A. Can non-selective beta-blockers prevent hepatocellular carcinoma in patients with cirrhosis? Med Hypotheses. (2013) 81:871–4. doi: 10.1016/j.mehy.2013.08.026 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  12. Pose E, Cardenas A. Translating our current understanding of ascites management into new therapies for patients with cirrhosis and fluid retention. Dig Dis. (2017) 35:402–10. doi: 10.1159/000456595 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  13. Caraceni P, Riggio O, Angeli P, Alessandria C, Neri S, Foschi FG, et al. Long-term albumin administration in decompensated cirrhosis (ANSWER): an open-label randomised trial. Lancet. (2018) 391:2417–29. doi: 10.1016/S0140-6736(18)30840-7 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  14. Fernández J, Clària J, Amorós A, Aguilar F, Castro M, Casulleras M, et al. Effects of albumin treatment on systemic and portal hemodynamics and systemic inflammation in patients with decompensated cirrhosis. Gastroenterology. (2019) 157:149–62. doi: 10.1053/j.gastro.2019.03.021 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  15. Wilde B, Katsounas A. Immune dysfunction and albumin-related immunity in liver cirrhosis. Mediators Inflamm. (2019) 2019:7537649. doi: 10.1155/2019/7537649 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  16. Bernardi M, Angeli P, Claria J, Moreau R, Gines P, Jalan R, et al. Albumin in decompensated cirrhosis: new concepts and perspectives. Gut. (2020) 69:1127–38. doi: 10.1136/gutjnl-2019-318843 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  17. Li S, Hong M, Tan HY, Wang N, Feng Y. Insights into the role and interdependence of oxidative stress and inflammation in liver diseases. Oxid Med Cell Longev. (2016) 2016:4234061. doi: 10.1155/2016/4234061 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  18. Zafra C, Abraldes JG, Turnes J, Berzigotti A, Fernández M, García-Pagán JC, et al. Simvastatin enhances hepatic nitric oxide production and decreases the hepatic vascular tone in patients with cirrhosis. Gastroenterology. (2004) 126:749–55. doi: 10.1053/j.gastro.2003.12.007 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  19. Kaplan DE, Mehta R, Garcia-Tsao G, Albrecht J, Aytaman A, Baffy G, et al. SACRED: Effect of simvastatin on hepatic decompensation and death in subjects with high-risk compensated cirrhosis: statins and cirrhosis: reducing events of decompensation. Contemp Clin Trials. (2021) 104:106367. doi: 10.1016/j.cct.2021.106367 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  20. Frenette CT, Morelli G, Shiffman ML, Frederick RT, Rubin RA, Fallon MB, et al. Emricasan improves liver function in patients with cirrhosis and high model for end-stage liver disease scores compared with placebo. Clin Gastroenterol Hepatol. (2019) 17:774–83.e4. doi: 10.1016/j.cgh.2018.06.012 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  21. Garcia-Tsao G, Fuchs M, Shiffman M, Borg BB, Pyrsopoulos N, Shetty K, et al. Emricasan (IDN-6556) lowers portal pressure in patients with compensated cirrhosis and severe portal hypertension. Hepatology. (2019) 69:717–28. doi: 10.1002/hep.30199 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  22. Garcia-Tsao G, Bosch J, Kayali Z, Harrison SA, Abdelmalek MF, Lawitz E, et al. Randomized placebo-controlled trial of emricasan for non-alcoholic steatohepatitis-related cirrhosis with severe portal hypertension. J Hepatol. (2020) 72:885–95. doi: 10.1016/j.jhep.2019.12.010 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  23. Bajaj JS, Salzman NH, Acharya C, Sterling RK, White MB, Gavis EA, et al. Fecal microbial transplant capsules are safe in hepatic encephalopathy: a phase 1, randomized, placebo-controlled trial. Hepatology. (2019) 70:1690–703. doi: 10.1002/hep.30690 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  24. Bajaj JS, Salzman N, Acharya C, Takei H, Kakiyama G, Fagan A, et al. Microbial functional change is linked with clinical outcomes after capsular fecal transplant in cirrhosis. JCI Insight. (2019) 4:e133410. doi: 10.1172/jci.insight.133410 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  25. Gao JH, Wen SL, Tong H, Wang CH, Yang WJ, Tang SH, et al. Inhibition of cyclooxygenase-2 alleviates liver cirrhosis via improvement of the dysfunctional gut-liver axis in rats. Am J Physiol – Gastrointest Liver Physiol. (2016) 310:G962–72. doi: 10.1152/ajpgi.00428.2015 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  26. Gao JH, Wen SL, Yang WJ, Lu YY, Tong H, Huang ZY, et al. Celecoxib ameliorates portal hypertension of the cirrhotic rats through the dual inhibitory effects on the intrahepatic fibrosis and angiogenesis. PLoS ONE. (2013) 8:e0146617. doi: 10.1371/journal.pone.0069309 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  27. Wen SL, Gao JH, Yang WJ, Lu YY, Tong H, Huang ZY, et al. Celecoxib attenuates hepatic cirrhosis through inhibition of epithelial-to-mesenchymal transition of hepatocytes. J Gastroenterol Hepatol. (2014) 29:1932–42. doi: 10.1111/jgh.12641 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  28. Su W, Tai Y, Tang SH, Ye YT, Zhao C, Gao JH, et al. Celecoxib attenuates hepatocyte apoptosis by inhibiting endoplasmic reticulum stress in thioacetamide-induced cirrhotic rats. World J Gastroenterol. (2020) 26:4094–107. doi: 10.3748/wjg.v26.i28.4094 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  29. Tang S, Huang Z, Jiang J, Gao J, Zhao C, Tai Y, et al. Celecoxib ameliorates liver cirrhosis via reducing inflammation and oxidative stress along spleen-liver axis in rats. Life Sci. (2021) 272:119203. doi: 10.1016/j.lfs.2021.119203 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  30. Li CJ, Yang ZH, Shi XL, Liu DL. Effects of aspirin and enoxaparin in a rat model of liver fibrosis. World J Gastroenterol. (2017) 23:6412–9. doi: 10.3748/wjg.v23.i35.6412 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  31. Assy N, Hussein O, Khalil A, Luder A, Szvalb S, Paizi M, et al. The beneficial effect of aspirin and enoxaparin on fibrosis progression and regenerative activity in a rat model of cirrhosis. Dig Dis Sci. (2007) 52:1187–93. doi: 10.1007/s10620-006-9595-1 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  32. Abdul-Hamid M, Ahmed RR, Moustafa N, Nady R. The antifibrogenic effect of etanercept on development of liver cirrhosis induced by thioacetamide in rats. Ultrastruct Pathol. (2017) 41:23–35. doi: 10.1080/01913123.2016.1256361 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  33. Abo-Zaid MA, Shaheen ES, Ismail AH. Immunomodulatory effect of curcumin on hepatic cirrhosis in experimental rats. J Food Biochem. (2020) 44:e13219. doi: 10.1111/jfbc.13219 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  34. Macías-Pérez JR, Vázquez-López BJ, Muñoz-Ortega MH, Aldaba-Muruato LR, Martínez-Hernández SL, Sánchez-Alemán E, et al. Curcumin and α/β-Adrenergic antagonists cotreatment reverse liver cirrhosis in hamsters: Participation of Nrf-2 and NF-κB. J Immunol Res. (2019) 2019:3019794. doi: 10.1155/2019/3019794 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  35. Kyung EJ, Kim HB, Hwang ES, Lee S, Choi BK, Kim JW, et al. Evaluation of hepatoprotective effect of curcumin on liver cirrhosis using a combination of biochemical analysis and magnetic resonance-based electrical conductivity imaging. Mediators Inflamm. (2018) 2018:5491797. doi: 10.1155/2018/5491797 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  36. Chenari S, Safari F, Moradi A. Curcumin enhances liver SIRT3 expression in the rat model of cirrhosis. Iran J Basic Med Sci. (2017) 20:1306–11. doi: 10.22038/IJBMS.2017.9609 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  37. Hsu SJ, Lee JY, Lin TY, Hsieh YH, Huang HC, Lee FY, et al. The beneficial effects of curcumin in cirrhotic rats with portal hypertension. Biosci Rep. (2017) 37:BSR20171015. doi: 10.1042/BSR20171015 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  38. Cai Y, Lu D, Zou Y, Zhou C, Liu H, Tu C, et al. Curcumin protects against intestinal origin endotoxemia in rat liver cirrhosis by targeting PCSK9. J Food Sci. (2017) 82:772–80. doi: 10.1111/1750-3841.13647 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  39. Hernández-Aquino E, Quezada-Ramírez MA, Silva-Olivares A, Ramos-Tovar E, Flores-Beltrán RE, Segovia J, et al. Curcumin downregulates Smad pathways and reduces hepatic stellate cells activation in experimental fibrosis. Ann Hepatol. (2020) 19:497–506. doi: 10.1016/j.aohep.2020.05.006 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  40. Seo HY, Kim MK, Lee SH, Hwang JS, Park KG, Jang BK. Kahweol ameliorates the liver inflammation through the inhibition of NF-κB and STAT3 activation in primary kupffer cells and primary hepatocytes. Nutrients. (2018) 10:863. doi: 10.3390/nu10070863 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  41. Arauz J, Moreno MG, Cortés-Reynosa P, Salazar EP, Muriel P. Coffee attenuates fibrosis by decreasing the expression of TGF-β and CTGF in a murine model of liver damage. J Appl Toxicol. (2013) 33:970–9. doi: 10.1002/jat.2788 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  42. Ali FEM, Bakr AG, Abo-youssef AM, Azouz AA, Hemeida RAM. Targeting Keap-1/Nrf-2 pathway and cytoglobin as a potential protective mechanism of diosmin and pentoxifylline against cholestatic liver cirrhosis. Life Sci. (2018) 207:50–60. doi: 10.1016/j.lfs.2018.05.048 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  43. Ali FEM, Azouz AA, Bakr AG, Abo-youssef AM, Hemeida RAM. Hepatoprotective effects of diosmin and/or sildenafil against cholestatic liver cirrhosis: the role of Keap-1/Nrf-2 and P38-MAPK/NF-κB/iNOS signaling pathway. Food Chem Toxicol. (2018) 120:294–304. doi: 10.1016/j.fct.2018.07.027 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  44. Tahir M, Rehman MU, Lateef A, Khan R, Khan AQ, Qamar W, et al. Diosmin protects against ethanol-induced hepatic injury via alleviation of inflammation and regulation of TNF-α and NF-κB activation. Alcohol. (2013) 47:131–9. doi: 10.1016/j.alcohol.2012.12.010 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  45. Zhang H, Lin Y, Zhen Y, Hu G, Meng X, Li X, et al. Therapeutic effect of glycyrrhizin arginine salt on rat cholestatic cirrhosis and its mechanism. Am J Chin Med. (2018) 46:1111–27. doi: 10.1142/S0192415X18500581 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  46. Tripathi DM, Vilaseca M, Lafoz E, Garcia-Calderó H, Viegas Haute G, Fernández-Iglesias A, et al. Simvastatin prevents progression of acute on chronic liver failure in rats with cirrhosis and portal hypertension. Gastroenterology. (2018) 155:1564–77. doi: 10.1053/j.gastro.2018.07.022 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  47. Meireles CZ, Pasarin M, Lozano JJ, García-Calderó H, Gracia-Sancho J, García-Pagán JC, et al. Simvastatin attenuates liver injury in rodents with biliary cirrhosis submitted to hemorrhage/resuscitation. Shock. (2017) 47:370–7. doi: 10.1097/SHK.0000000000000734 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  48. Uschner FE, Ranabhat G, Choi SS, Granzow M, Klein S, Schierwagen R, et al. Statins activate the canonical hedgehog-signaling and aggravate non-cirrhotic portal hypertension, but inhibit the non-canonical hedgehog signaling and cirrhotic portal hypertension. Sci Rep. (2015) 5:14573. doi: 10.1038/srep14573 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  49. Shirin H, Sharvit E, Aeed H, Gavish D, Bruck R. Atorvastatin and rosuvastatin do not prevent thioacetamide induced liver cirrhosis in rats. World J Gastroenterol. (2013) 19:241–8. doi: 10.3748/wjg.v19.i2.241 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  50. Jang YO, Kim SH, Cho MY, Kim KS, Park KS, Cha SK, et al. Synergistic effects of simvastatin and bone marrow-derived mesenchymal stem cells on hepatic fibrosis. Biochem Biophys Res Commun. (2018) 497:264–71. doi: 10.1016/j.bbrc.2018.02.067 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  51. Gracia-Sancho J, Manicardi N, Ortega-Ribera M, Maeso-Díaz R, Guixé-Muntet S, Fernández-Iglesias A, et al. Emricasan ameliorates portal hypertension and liver fibrosis in cirrhotic rats through a hepatocyte-mediated paracrine mechanism. Hepatol Commun. (2019) 3:987–1000. doi: 10.1002/hep4.1360 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  52. Boyer-Diaz Z, Aristu-Zabalza P, Andrés-Rozas M, Robert C, Ortega-Ribera M, Fernández-Iglesias A, et al. Pan-PPAR agonist lanifibranor improves portal hypertension and hepatic fibrosis in experimental advanced chronic liver disease. J Hepatol. (2021) 74:1188–99. doi: 10.1016/j.jhep.2020.11.045 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  53. Jun JH, Park SY, Park S, Park HJ, Kim JY, Park GT, et al. Formyl peptide receptor 2 alleviates hepatic fibrosis in liver cirrhosis by vascular remodeling. Int J Mol Sci. (2021) 22:1–4. doi: 10.3390/ijms22042107 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  54. Vilaseca M, García-Calderó H, Lafoz E, Ruart M, López-Sanjurjo CI, Murphy MP, et al. Mitochondria-targeted antioxidant mitoquinone deactivates human and rat hepatic stellate cells and reduces portal hypertension in cirrhotic rats. Liver Int. (2017) 37:1002–12. doi: 10.1111/liv.13436 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  55. Turkseven S, Bolognesi M, Brocca A, Pesce P, Angeli P, Di Pascoli M. Mitochondria-targeted antioxidant mitoquinone attenuates liver inflammation and fibrosis in cirrhotic rats. Am J Physiol – Gastrointest Liver Physiol. (2020) 318:G298–304. doi: 10.1152/ajpgi.00135.2019 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  56. Zaidi SNF, Mahboob T. Prevention of liver cirrhosis by Silymarin. Pak J Pharm Sci. (2017) 30:1203–11. Google Scholar
  57. Ghobadi Pour M, Mirazi N, Alaei H, Moradkhani S, Rajaei Z, Monsef Esfahani A. Effects of lactulose and silymarin on liver enzymes in cirrhotic rats. Can J Physiol Pharmacol. (2017) 95:522–9. doi: 10.1139/cjpp-2016-0454 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  58. Ali SO, Darwish HAEM, Ismail NAEF. Modulatory effects of curcumin, silybin-phytosome and alpha-R-lipoic acid against thioacetamide-induced liver cirrhosis in rats. Chem Biol Interact. (2014) 216:26–33. doi: 10.1016/j.cbi.2014.03.009 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  59. Abdel-Moneim AM, Al-Kahtani MA, El-Kersh MA, Al-Omair MA. Free radical-scavenging, anti-inflammatory/anti-fibrotic and hepatoprotective actions of taurine and silymarin against CCl4 induced rat liver damage. PLoS ONE. (2015) 10:e0144509. doi: 10.1371/journal.pone.0144509 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  60. Aithal AP, Bairy LK, Seetharam RN, Kumar N. Hepatoprotective effect of bone marrow-derived mesenchymal stromal cells in CCl4-induced liver cirrhosis. 3 Biotech. (2021) 11:107. doi: 10.1007/s13205-021-02640-y PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  61. Yang N, Chen H, Gao Y, Zhang S, Lin Q, Ji X, et al. Tanshinone IIA exerts therapeutic effects by acting on endogenous stem cells in rats with liver cirrhosis. Biomed Pharmacother. (2020) 132:110815. doi: 10.1016/j.biopha.2020.110815 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  62. Liu R, Kang JD, Sartor RB, Sikaroodi M, Fagan A, Gavis EA, et al. Neuroinflammation in murine cirrhosis is dependent on the gut microbiome and is attenuated by fecal transplant. Hepatology. (2020) 71:611–26. doi: 10.1002/hep.30827 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  63. Chen YX, Lai LN, Zhang HY, Bi YH, Meng L, Li XJ, et al. Effect of artesunate supplementation on bacterial translocation and dysbiosis of gut microbiota in rats with liver cirrhosis. World J Gastroenterol. (2016) 22:2949–59. doi: 10.3748/wjg.v22.i10.2949 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  64. Fortea JI, Zipprich A, Fernandez-Mena C, Puerto M, Bosoi CR, Almagro J, et al. Enoxaparin does not ameliorate liver fibrosis or portal hypertension in rats with advanced cirrhosis. Liver Int. (2018) 38:102–12. doi: 10.1111/liv.13510 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  65. Cerini F, Vilaseca M, Lafoz E, García-Irigoyen O, García-Calderó H, Tripathi DM, et al. Enoxaparin reduces hepatic vascular resistance and portal pressure in cirrhotic rats. J Hepatol. (2016) 64:834–42. doi: 10.1016/j.jhep.2015.12.003 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  66. Tilg H. Cytokines and liver diseases. Can J Gastroenterol. (2001) 15:661–8. doi: 10.1155/2001/746736 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  67. Gao JH, Wen SL, Feng S, Yang WJ, Lu YY, Tong H, et al. Celecoxib and octreotide synergistically ameliorate portal hypertension via inhibition of angiogenesis in cirrhotic rats. Angiogenesis. (2016) 19:501–11. doi: 10.1007/s10456-016-9522-9 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  68. Lebrec D, Thabut D, Oberti F, Perarnau JM, Condat B, Barraud H, et al. Pentoxifylline does not decrease short-term mortality but does reduce complications in patients with advanced cirrhosis. Gastroenterology. (2010) 138:1755–62. doi: 10.1053/j.gastro.2010.01.040 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  69. Frenette C, Kayali Z, Mena E, Mantry PS, Lucas KJ, Neff G, et al. Emricasan to prevent new decompensation in patients with NASH-related decompensated cirrhosis. J Hepatol. (2021) 74:274–82. doi: 10.1016/j.jhep.2020.09.029 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  70. Krasselt M, Baerwald C. Celecoxib for the treatment of musculoskeletal arthritis. Expert Opin Pharmacother. (2019) 20:1689–702. doi: 10.1080/14656566.2019.1645123 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  71. Puljak L, Marin A, Vrdoljak D, Markotic F, Utrobicic A, Tugwell P. Celecoxib for osteoarthritis. Cochrane Database Syst Rev. (2017) 2017:CD009865. doi: 10.1002/14651858.CD009865.pub2 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  72. Mohammed NA, El-Aleem SA, El-Hafiz HA, McMahon RFT. Distribution of constitutive (COX-1) and inducible (COX-2) cyclooxygenase in postviral human liver cirrhosis: a possible role for COX-2 in the pathogenesis of liver cirrhosis. J Clin Pathol. (2004) 57:350–4. doi: 10.1136/jcp.2003.012120 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  73. El-Bassiouny A, Zoheiry MMK, Nosseir MMF, El-Ahwany EG, Ibrahim RA, El-Bassiouni NEI. Expression of cyclooxygenase-2 and transforming growth factor-beta 1 in HCV-induced chronic liver disease and hepatocellular carcinoma. MedGenMed. (2007) 9:45. PubMed Abstract | Google Scholar
  74. Li T, Dong ZR, Guo ZY, Wang CH, Tang ZY, Qu SF, et al. Aspirin enhances IFN-α-induced growth inhibition and apoptosis of hepatocellular carcinoma via JAK1/STAT1 pathway. Cancer Gene Ther. (2013) 20:366–74. doi: 10.1038/cgt.2013.29 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  75. Jiang ZG, Feldbrügge L, Tapper EB, Popov Y, Ghaziani T, Afdhal N, et al. Aspirin use is associated with lower indices of liver fibrosis among adults in the United States. Aliment Pharmacol Ther. (2016) 43:734–43. doi: 10.1111/apt.13515 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  76. Shin S, Lee SH, Lee M, Kim JH, Lee W, Lee HW, et al. Aspirin and the risk of hepatocellular carcinoma development in patients with alcoholic cirrhosis. Medicine. (2020) 99:e19008. doi: 10.1097/MD.0000000000019008 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  77. Lee TY, Hsu YC, Tseng HC, Yu SH, Lin JT, Wu MS, et al. Association of daily aspirin therapy with risk of hepatocellular carcinoma in patients with chronic hepatitis B. JAMA Intern Med. (2019) 179:633–40. doi: 10.1001/jamainternmed.2018.8342 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  78. Böhm F, Köhler UA, Speicher T, Werner S. Regulation of liver regeneration by growth factors and cytokines. EMBO Mol Med. (2010) 2:294–305. doi: 10.1002/emmm.201000085 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  79. Baeck C, Tacke F. Balance of inflammatory pathways and interplay of immune cells in the liver during homeostasis and injury. EXCLI J. (2014) 13:67–81. PubMed Abstract | Google Scholar
  80. Tang KT, Dufour JF, Chen PH, Hernaez R, Hutfless S. Antitumour necrosis factor-α agents and development of new-onset cirrhosis or non-alcoholic fatty liver disease: a retrospective cohort. BMJ Open Gastroenterol. (2020) 7:e000349. doi: 10.1136/bmjgast-2019-000349 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  81. Qiu P, Sun J, Man S, Yang H, Ma L, Yu P, et al. Curcumin attenuates N-Nitrosodiethylamine-induced liver injury in mice by utilizing the method of metabonomics. J Agric Food Chem. (2017) 65:2000–7. doi: 10.1021/acs.jafc.6b04797 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  82. Nouri-Vaskeh M, Malek Mahdavi A, Afshan H, Alizadeh L, Zarei M. Effect of curcumin supplementation on disease severity in patients with liver cirrhosis: a randomized controlled trial. Phyther Res. (2020) 34:1446–54. doi: 10.1002/ptr.6620 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  83. He G, Karin M. NF-κB and STAT3- key players in liver inflammation and cancer. Cell Res. (2011) 21:159–68. doi: 10.1038/cr.2010.183 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  84. Cárdenas C, Quesada AR, Medina MA. Anti-angiogenic and anti-inflammatory properties of kahweol, a coffee diterpene. PLoS ONE. (2011) 6:e23407. doi: 10.1371/annotation/38262cc6-07cc-4074-8ce7-2181d4d0fbdc PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  85. Bektas S, Karakaya K, Can M, Bahadir B, Guven B, Erdogan N, et al. The effects of tadalafil and pentoxifylline on apoptosis and nitric oxide synthase in liver ischemia/reperfusion injury. Kaohsiung J Med Sci. (2016) 32:339–47. doi: 10.1016/j.kjms.2016.05.005 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  86. Li H, Hua J, Guo CX, Wang WX, Wang BJ, Yang DL, et al. Pentoxifylline inhibits liver fibrosis via hedgehog signaling pathway. J Huazhong Univ Sci Technol – Med Sci. (2016) 36:372–6. doi: 10.1007/s11596-016-1594-7 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  87. Zheng Y, Zhang R, Shi W, Li L, Liu H, Chen Z, et al. Metabolism and pharmacological activities of the natural health-benefiting compound diosmin. Food Funct. (2020) 11:8472–92. doi: 10.1039/D0FO01598A PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  88. Dastagir G, Rizvi MA. Review Glycyrrhiza glabra L. (Liquorice). Pak J Pharm Sci. (2016) 29:1727–33. PubMed Abstract | Google Scholar
  89. Tsochatzis EA, Bosch J. Statins in cirrhosis—ready for prime time. Hepatology. (2017) 66:697–9. doi: 10.1002/hep.29277 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  90. Bang UC, Benfield T, Bendtsen F. Reduced risk of decompensation and death associated with use of statins in patients with alcoholic cirrhosis. a nationwide case-cohort study. Aliment Pharmacol Ther. (2017) 46:673–80. doi: 10.1111/apt.14243 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  91. Pose E, Trebicka J, Mookerjee RP, Angeli P, Ginès P. Statins: old drugs as new therapy for liver diseases? J Hepatol. (2019) 70:194–202. doi: 10.1016/j.jhep.2018.07.019 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  92. Pollo-Flores P, Soldan M, Santos UC, Kunz DG, Mattos DE, da Silva AC, et al. Three months of simvastatin therapy vs. placebo for severe portal hypertension in cirrhosis: a randomized controlled trial. Dig Liver Dis. (2015) 47:957–63. doi: 10.1016/j.dld.2015.07.156 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  93. Abraldes JG, Villanueva C, Aracil C, Turnes J, Hernandez-Guerra M, Genesca J, et al. Addition of simvastatin to standard therapy for the prevention of variceal rebleeding does not reduce rebleeding but increases survival in patients with cirrhosis. Gastroenterology. (2016) 150:1160–70.e3. doi: 10.1053/j.gastro.2016.01.004 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  94. Abraldes JG, Albillos A, Bañares R, Turnes J, González R, García-Pagán JC, et al. Simvastatin lowers portal pressure in patients with cirrhosis and portal hypertension: a randomized controlled trial. Gastroenterology. (2009) 136:1651–8. doi: 10.1053/j.gastro.2009.01.043 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  95. Huang YW, Lee CL, Yang SS, Fu SC, Chen YY, Wang TC, et al. Statins reduce the risk of cirrhosis and its decompensation in chronic hepatitis b patients: a nationwide cohort study. Am J Gastroenterol. (2016) 111:976–85. doi: 10.1038/ajg.2016.179 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  96. Motzkus-Feagans C, Pakyz AL, Ratliff SM, Bajaj JS, Lapane KL. Statin use and infections in veterans with cirrhosis. Aliment Pharmacol Ther. (2013) 38:611–8. doi: 10.1111/apt.12430 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  97. Bishnu S, Ahammed SKM, Sarkar A, Hembram J, Chatterjee S, Das K, et al. Effects of atorvastatin on portal hemodynamics and clinical outcomes in patients with cirrhosis with portal hypertension: a proof-of-concept study. Eur J Gastroenterol Hepatol. (2018) 30:54–9. doi: 10.1097/MEG.0000000000001006 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  98. Kumar S, Grace ND, Qamar AA. Statin use in patients with cirrhosis: a retrospective cohort study. Dig Dis Sci. (2014) 59:1958–65. doi: 10.1007/s10620-014-3179-2 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  99. Simon TG, Bonilla H, Yan P, Chung RT, Butt AA. Atorvastatin and fluvastatin are associated with dose-dependent reductions in cirrhosis and hepatocellular carcinoma, among patients with hepatitis C virus: results from ERCHIVES. Hepatology. (2016) 64:47–57. doi: 10.1002/hep.28506 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  100. Mohanty A, Tate JP, Garcia-Tsao G. Statins are associated with a decreased risk of decompensation and death in veterans with hepatitis c-related compensated cirrhosis. Gastroenterology. (2016) 150:430–40.e1. doi: 10.1053/j.gastro.2015.10.007 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  101. Chang FM, Wang YP, Lang HC, Tsai CF, Hou MC, Lee FY, et al. Statins decrease the risk of decompensation in hepatitis B virus– and hepatitis C virus–related cirrhosis: a population-based study. Hepatology. (2017) 66:896–907. doi: 10.1002/hep.29172 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  102. Abd-Elsalam S, Elwan N, Salah R, Hamisa M, Shady E, Hawash N. Evaluation of portal pressure by doppler ultrasound in patients with cirrhosis before and after simvastatin administration – a randomized controlled trial. F1000Research. (2018) 7:256. doi: 10.12688/f1000research.13915.1 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  103. Kaplan DE, Serper MA, Mehta R, Fox R, John B, Aytaman A, et al. Effects of hypercholesterolemia and statin exposure on survival in a large national cohort of patients with cirrhosis. Gastroenterology. (2019) 156:1693–706.e12. doi: 10.1053/j.gastro.2019.01.026 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  104. Hung TH, Tsai CC, Lee HF. Statin use in cirrhotic patients with infectious diseases: a population-based study. PLoS ONE. (2019) 14:e0215839. doi: 10.1371/journal.pone.0215839 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  105. Liss KHH, Finck BN. PPARs and nonalcoholic fatty liver disease. Biochimie. (2017) 136:65–74. doi: 10.1016/j.biochi.2016.11.009 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  106. Fathalah WF, Aziz MAA, Soud NHA El, Raziky MES El. High dose of silymarin in patients with decompensated liver disease: a randomized controlled trial. J Interf Cytokine Res. (2017) 37:480–7. doi: 10.1089/jir.2017.0051 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  107. Bataller R, Schwabe RF, Choi YH, Yang L, Paik YH, Lindquist J, et al. NADPH oxidase signal transduces angiotensin II in hepatic stellate cells and is critical in hepatic fibrosis. J Clin Invest. (2003) 112:1383–94. doi: 10.1172/JCI18212 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  108. Federico A, Dallio M, Loguercio C. Silymarin/Silybin and chronic liver disease: a marriage of many years. Molecules. (2017) 22:191. doi: 10.3390/molecules22020191 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  109. Woodhouse CA, Patel VC, Goldenberg S, Sanchez-Fueyo A, China L, O’Brien A, et al. PROFIT, a PROspective, randomised placebo controlled feasibility trial of faecal microbiota transplantation in cirrhosis: study protocol for a single-blinded trial. BMJ Open. (2019) 9:e023518. doi: 10.1136/bmjopen-2018-023518 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  110. Cirera I, Martin Bauer T, Miguel N, Vila J, Grande L, Taurá P, et al. Bacterial translocation of enteric organisms in patients with cirrhosis. J Hepatol. (2001) 34:32–7. doi: 10.1016/S0168-8278(00)00013-1 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  111. Villa E, Cammà C, Marietta M, Luongo M, Critelli R, Colopi S, et al. Enoxaparin prevents portal vein thrombosis and liver decompensation in patients with advanced cirrhosis. Gastroenterology. (2012) 143:1253–60.e4. doi: 10.1053/j.gastro.2012.07.018 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  112. Frizelle S, Schwarz J, Huber SA, Leslie K. Evaluation of the effects of low molecular weight heparin on inflammation and collagen deposition in chronic coxsackievirus B3-induced myocarditis in A/J mice. Am J Pathol. (1992) 141:203–9 PubMed Abstract | Google Scholar
  113. Tripodi A, Primignani M, Chantarangkul V, Dell’Era A, Clerici M, de Franchis R, et al. An imbalance of pro- vs anti-coagulation factors in plasma from patients with cirrhosis. Gastroenterology. (2009) 137:2105–11. doi: 10.1053/j.gastro.2009.08.045 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  114. Lisman T, Leebeek FWG. Hemostatic alterations in liver disease: a review on pathophysiology, clinical consequences, and treatment. Dig Surg. (2007) 24:250–8. doi: 10.1159/000103655 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  115. Shi MJ, Dong BS, Yang WN, Su SB, Zhang H. Preventive and therapeutic role of Tanshinone IIA in hepatology. Biomed Pharmacother. (2019) 112:108676. doi: 10.1016/j.biopha.2019.108676 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  116. Nouri-Vaskeh M, Afshan H, Malek Mahdavi A, Alizadeh L, Fan X, Zarei M. Curcumin ameliorates health-related quality of life in patients with liver cirrhosis: a randomized, double-blind placebo-controlled trial. Complement Ther Med. (2020) 49:102351. doi: 10.1016/j.ctim.2020.102351 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  117. Pose E, Napoleone L, Amin A, Campion D, Jimenez C, Piano S, et al. Safety of two different doses of simvastatin plus rifaximin in decompensated cirrhosis (LIVERHOPE-SAFETY): a randomised, double-blind, placebo-controlled, phase 2 trial. Lancet Gastroenterol Hepatol. (2020) 5:31–41. doi: 10.1016/S2468-1253(19)30320-6 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  118. Bajaj JS, Kakiyama G, Savidge T, Takei H, Kassam ZA, Fagan A, et al. Antibiotic-associated disruption of microbiota composition and function in cirrhosis is restored by fecal transplant. Hepatology. (2018) 68:1549–58. doi: 10.1002/hep.30037 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  119. Clària J, Kent JD, López-Parra M, Escolar G, Ruiz-del-Arbol L, Ginès P, et al. Effects of celecoxib and naproxen on renal function in nonazotemic patients with cirrhosis and ascites. Hepatology. (2005) 41:579–87. doi: 10.1002/hep.20595 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  120. Guevara M, Abecasis R, Terg R. Effect of celecoxib on renal function in cirrhotic patients with ascites. a pilot study. Scand J Gastroenterol. (2004) 39:385–6. doi: 10.1080/00365520310008205 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  121. Moroni F, Dwyer BJ, Graham C, Pass C, Bailey L, Ritchie L, et al. Safety profile of autologous macrophage therapy for liver cirrhosis. Nat Med. (2019) 25:1560–5. doi: 10.1038/s41591-019-0599-8 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar
  122. Takeuchi S, Tsuchiya A, Iwasawa T, Nojiri S, Watanabe T, Ogawa M, et al. Small extracellular vesicles derived from interferon-γ pre-conditioned mesenchymal stromal cells effectively treat liver fibrosis. npj Regen Med. (2021) 6:19. doi: 10.1038/s41536-021-00132-4 PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar

Lire aussi :

Numéro récent

Total
0
Share